(民國 92 年 11 月 17 日修正)
1 |
壹 前言 消化器官的主要功能是使食物消化,營養素吸收及排便。消化最主要 是經由消化酵素的作用,自律神經的調節及體液性的調節 (消化管荷 爾蒙等) 等系統來控制。因此,除了病原菌的侵襲外,各種飲食內容 的改變及精神壓力或過敏都會引起胃腸道的不適,影響食物的消化及 營養素的吸收。 人類的腸道中棲息了約數百種細菌,這些正常菌相的存在,除了可抑 制有害病菌在腸內孳生及危害外,且可產生人體所需的物質,如維生 素 B 及 K 等。在人體正常菌相中,包含了有益菌與有害菌,有益 菌產生的代謝產物 (如乳酸與醋酸) 可抑制有害菌的增殖,對健康的 維持與整腸方面有相當的幫助。一般健康人體腸道中有害細菌 (如產 氣莢膜梭菌 Clost idium perfringens) 含量不高,無法危害人體, 然而身體的不適,飲食及環境的變化、精神壓力、老化等都可能使有 害菌增加,造成腸內菌相平衡的崩解,進而引起便祕、下痢。 食品種類繁多,其中部分食品可改善食慾,促進消化酵素的分泌,增 進胃腸蠕動,增加小腸吸收。食品亦可因含有利腸道益生菌生長的成 分,或本身含有腸道中的有益細菌,因而具改善腸內菌相的功能。因 此,若食品具有 (1) 促進消化吸收, (2) 改善腸內細菌菌相, ( 3) 促進胃腸蠕動,幫助維持腸道正常機能等三種功能中任一種功能 時,可認為具有改善胃腸道功能。 |
2 |
貳 實驗方法及結果判定 一 評估對胃腸道功能改善之要點與原則: (一) 改善胃腸功能必須明確具有以下四種功能指標之ㄧ。 1 促進消化吸收 2 改善腸內細菌菌相 3 幫助 (改善) 胃腸運動 4 有助於胃黏膜之保護作用 (二) 所進行的實驗可分為動物實驗與人體實驗,兩者可擇一施行。 (三) 若廠商所提產品的相關科學研究證據不明確或不足時,須同時進行 「人體實驗」和「動物實驗」,以加強證據之可信度。 (四) 動物實驗進行時間至少需 4 星期以上,人體實驗至少需進行 2 星期以上。 (五) 所使用的實驗動物以哺乳類動物為原則,動物隻數每組至少為 8 隻,小白鼠隻數每組至少為 10 隻。 (六) 實驗動物必須來自各大實驗動物中心。 (七) 人體實驗每組人數至少為 8 人,且必須有控制組。 (八) 人體實驗必須由大學食品、營養、醫藥等相關系所、研究機構、醫 學中心執行,需有醫師參與,並遵循衛生單位對人體實驗有關之相 關規定。 (九) 動物實驗進行時,飼料的內容與比例,必須符合 AIN (American Institute of Nutrition) 之規範,進行人體實驗的飲食內容與比 例,必須符合衛生署所公布之飲食指南。 (一○) 評估對胃腸道功能所採用的實驗方法,必須是學術界或醫學單位 所採用或普遍認可之方法,亦可使用市售的生化試劑 (Test Kit ) 直接測定之。 二 促進消化吸收 (一) 動物實驗 1 動物體重的測定及消化吸收率的測定 2 消化酵素活性的測定:如 trypsin, chymotrypsin, amylase, lipase, leucine amino peptidase, disaccharidase。 (二) 人體實驗: 1 有關改善食慾不佳方面,觀察食慾、食量、體重、血紅素等指標 的變化。 2 有關改善消化吸收不良方面,觀察食慾、食量、胃腸腹脹感、糞 便形狀及次數、胃腸運動及小腸吸收等指標變化。 (三) 結果判定: 1 動物實驗中必須至少一項指標為實驗組明顯優於控制組 (p<0.05 ) 。 2 人體實驗方面,如果是針對改善兒童食慾方面,以食慾、食量的 改善為觀察重點。體重及血紅素的變化則作為輔助指標。 3 針對消化吸收不良者,除了有明顯改善食慾、食量,胃腸腹脹感 及糞便形狀等消化不良症狀外,在小腸吸收指標中至少有一項指 標為實驗組明顯優於控制組 (p<0.05) 。 4 如果符合以上要求即可判定測試食品具有促進消化吸收作用。 (四) 測定方法 1 消化酵素活性測定 樣品製備: 截取實驗老鼠 (Sprague-Dawley或Wistar 品系) 小腸片段,刮 下腸黏膜 (脂解酵素活性測定不必刮下腸黏膜) ,取 0.2g 加入 2mL 含 protease 抑制劑 (1 mM phenylmethylsulfonylfluori- de 及 2.2 mM iodoacetic acid) 之 4℃、0.9% NaCl 溶液, 以均質機均質化。 (1) 雙醣酵素 (disaccharidase) 活性測定 目的:測定小腸雙醣類消化酵素 (乳糖酵素、麥芽糖酵素與蔗 糖酵素) 活性。 測定方法:取 30mL 的腸黏膜均質液加入 15 mL 的 56mM 雙 醣溶液 (乳糖、麥芽糖或蔗糖) 於 37 ℃下作用 30 分鐘,再 加入100 mL 的 0.6 N NaOH 溶液溶解細胞,另以 10mL 的 6 N HCl 溶液中和之。取 45mL 處理過後之腸黏膜液或葡萄糖標 準液 (0-40 mg/mL) 與 625 mL 反應緩衝液 (50 mM Tris-ma- late、33 mM sodium potassium phosphate 與 30 mM MgCl2 ,pH 6.8) 、150 mL 的 1 mM ATP、150 mL 的 1 mM NADP、 15 mL 的 330 IU/mL hexokinase (EC 2.7.1.11) 與 15mL 的 170 IU/mL glucose-6-phosphate dehydrogenase (EC 1.1.1 .49) 於 37 ℃下作用 30 分鐘,最後將樣品置於冰浴上以終 止其反應。葡萄糖產物含量則以分光光度計於 30 nm 波長下 測定減少的 NADPH ,並以改良的 Lowry 方法測定樣品中蛋 白質含量,而雙醣酵素活性以 mM 葡萄糖/分鐘/㎎蛋白質表 示之。 (2) 脂解酵素 (lipase) 活性測定 目的:測定小腸內脂質消化酵素活性 測定方法:用市售試劑組 (Sigma Lipase-PSa) 測定之。將 9 00 mL 受質溶液 (1.1 mM 1,2- diglyceride、2 mM sodium N -ethyl-N- (2-hydroxy-3-sulfopropyl) -m-toluidine、0.66 mM ATP、860 U/L monoglyceride lipase、1340 U/L glycer- ol kinase、40,000 U/L glycerol-3-phosphate oxidase、13 40 U/L horseradish peroxidase、40,000 U/L co-lipase 與 緩衝液) 加至 15mL 之腸均質液或標準液 (附於試劑組) 中, 於 37 ℃下作用 3-5 分鐘,再加入 300mL 活化劑 (36 mM deoxycholate、6 mM 4-aminoantipyrine、0.05% sodium az- ide 與緩衝液) ,於 37 ℃下作用 3 分鐘後,以分光光度計 於 550 nm 波長下測定2分鐘,並以改良的 Lowry 方法測定樣 品中蛋白質含量,而脂解酵素活性以 unit/mg 蛋白質表示之 。 (3) 白胺酸胺基酵素 (leucine aminopeptidase,LAP) 活性測定 目的:測定小腸絨毛刷狀緣膜上蛋白質消化酵素活性。 測定方法:用市售試劑組 (Sigma Diagnosticsa LAP) 測定之 。取 0.5 mL 腸黏膜均質液,混合 0.5 mL LAP 受質溶液 (20 mg/dL L-leucyl-b-naphthylamine 溶於 phosphate 緩衝液 , pH 7.1) ,於 37oC 下作用 1 小時,再加入 0.5 mL 的 2 N HCl,1.5 mL 處理過後之腸黏膜液或 1.5 mL 標準液 (0- 12 Sigma unit/mL) 與 0.5 mL sodium nitrite 溶液,於室 溫下作用 3 分鐘後,混合 1.0 mL 0.5% (w/v) ammonium s- ulfamate ,於室溫下作用3分鐘,再加入 2.0 mL N-1-naph- thylethylenediamine 酒精溶液,於室溫下作用 45 分鐘後, 以分光光度計於 580 nm 波長下測定吸光值,並以改良的 Lo- wry 方法測定樣品中蛋白質含量,而白胺酸胺基之酵素活性以 Sigma unit/mg 蛋白質表示之。1 Sigma unit 定義為於 37 ℃、pH 7.1 下,每 1 小時生成 1 mmole b-naphthylamine 的酵素量。 判定:以上各一項有改善,表示有改善胃腸消化之功能。 2 改善胃腸功能之參考指標: (1) Lundh 測試 (主要為胰臟功能) : 使用 300 ml 之流質食物 (含 6 %脂肪、5 %蛋白質及 15 %醣類) ,並放置十二指腸管,依時段抽取十二指腸液,以測 定消化酵素之濃度 (如 Trypsin) 或以內視鏡抽取胰液作消化 酵素之分析。 (2) Schilling 測試 (主要為胃腸功能) -以維生素 B12 之吸收來測定胃腸功能 -以放射性標示之維他命 B12 給予空腹之受試者 -一小時後再由肌肉注射未標示 B12 -24 小時後收集尿液,並測定 B12 含量 -7 天後重複此步驟,但口服 B12 則加入Intrinsic factor -兩次檢查加以比較評估 (3) 脂肪之吸收判定: 糞便脂肪分析: -正常值:< 7g/day -每日食用食物中至少有 100 g 中鏈三酸甘油酯共三天;並 收集糞便 3 天 -測定糞便中脂肪含量 -使用 Sudan stain ,只可測三酸甘油酯及 lipalytic pr- oduct (4) D-xylose 耐受測試 (主要為小腸功能) : -主要測定近端小腸之醣類吸收 -隔夜禁食,再服用 25g 之 D-xylose ,5 小時後之尿液中 若 xylose 排出大於 25 %,即表示正常。 -1 及 2 小時抽血,若其中一次大人血中 xylose>300 mg/L ,或小孩血中 xylose >100 mg/L ,則表示正常。 (5) 核子醫學檢查 目前只使用於 gastric emptying study -受試者服下含有放射源 (Tc-99m and In-111) 的固體及液 體食物 -測量受試者 90 分後的胃排空率 (6) 放射線科檢查 小腸排空速度檢測 -受試者喝下 600 cc barium 後,隔 15 分透視一次,直到 barium 完全排出ileocecal valve 三 改善腸內細菌菌相 (一) 動物實驗: 1 檢測 1 種益生菌:Bifidobacterium 2 檢測 1 種有害 (或無益) 菌:Clostridium perfringens (二) 人體實驗: 1 檢測 1 種益生菌:Bifidobacterium 2 檢測 1 種有害 (或無益) 菌:Clostridium perfringens (三) 測定方法: 1 腸內細菌菌相 (1) 材料 a 大白鼠:雄性 Spraguae Dawley (SD) 或 Wistar 系統大 白鼠之盲腸或糞便。 b 人體糞便。 培養基 a 雙叉桿菌 (Bifidobacteria) 參考培養基: (a) Bifidobacteria iodoacetate medium -25 (BIM-25) (b) MPN medium (c) Beerens medium b 產氣莢膜梭菌 (Clostridium perfringens) 參考培養基 Tryptose-sulfite-D-cycloserine (TSC) agar 有關製備請參考各相關參考文獻。 (2) 方法 a 取樣及均質 (a) 動物實驗:以按摩方式收集糞便於密閉容器內 (維持厭 氧狀態) ,再於厭氧操作箱內秤取約 0.5 g,加入含 4 .5 mL 無菌厭氧稀釋液 (附註) 之試管中 (內含 5 粒 玻璃珠) ,以試管震盪器混合。 (a) -1 大白鼠經餵養試驗後,麻醉,解剖,在厭氧狀況取 出盲腸 (cecum) 內容物,秤取約 1 g,加入含 9 mL 無菌厭氧稀釋液之試管中 (內含 5 粒玻璃珠) ,以試 管震盪器混合。 (b) 人體試驗:收集糞便於密閉容器內 (維持厭氧狀態) , 再於厭氧操作箱內,進行如同上述大白鼠樣品之秤重及 均質操作。 2 稀釋及微生物平板分析 於厭氧狀況下,上述均質液以厭氧稀釋液進行一系列十倍稀釋。 取適當稀釋倍數,以表面塗抹法 (spread plate method) 或混 稀平板法 (pour plate method) 加入雙叉桿菌培養基中,置於 厭氧操作箱或厭氧缸中 (內含厭氧包,或抽氣維持厭氧狀態) , 於 35~37 ℃培養,計數菌落數。 至於產氣莢膜梭菌之計數,請依照美國 FDA 發行的 Bacterio- logical Analytical Manual (BAM) 。 3 統計分析 實驗數據經統計變異數分析 (Analysis of variance ANOVA) 測 試各實驗組間是否有差異,若有差異再以鄧肯氏多變試驗 (Dun- can,s multiple range test) 作進一步分析,以決定各實驗組 在 95 %可信度內是否有差異。 (四) 結果判定 動物實驗:若盲腸或糞便的 bifidobacteria 明顯增加,以及 Cl- ostridium perfringens 減少或無明顯變化者,則稱之具改善腸內 細菌相功能。 人體試驗:若 bifidobacteria 明顯增加,以及 Clostridium pe- rfringens 減少或無明顯變化者,則稱之具改善腸內細菌相功能。 附註:厭氧稀釋液之製備如下: Gelatin 0.2 g Distilled water 50 mL Salts solution (如 2.1.3 中 salts solution 配方) 50 mL Resazurin solution (25 mg/100 mL H2O) 0.4 mL 將各成分混合,煮沸,冷卻,再加入 0.05 g cysteine,以厭氧操 作分裝入試管中,每一試管裝 9 mL ,以 121 ℃殺菌 15 min , 殺菌完成或實驗過程呈粉紅色,請勿使用。 四 幫助 (改善) 胃腸運動,促進腸道正常機能之維持 (一) 動物實驗: 1 胃腸運動 (活性碳、腸鋇計檢查或核子醫學檢查) 2 胃黏膜保護 3 觀察糞便之乾重、粒數、水分及形狀 (二) 人體實驗: 1 腸運動 (腸鋇計檢查或核子醫學檢查) 2 觀察排便時間,糞便重量、水分及形狀及排便感覺之變化。 (三) 檢查方法 胃腸運動測定: 1 動物實驗 (1) 離體實驗:擷取絕食老鼠之胃或腸片段約 1-2cm ,放於組織 浴 (organ bath) 中並通氣之 (95%O2,5%CO2) ,放置 2hr 使其穩定而後做等長收縮 (0.5-1 gm) ,視測試食品對於胃或 腸片段之收縮情況,若實驗組明顯優於控制組 (p<0.05) ,即 可判定,即可判定測試食品具有改善胃腸運動之功能。 (2) 活體實驗:動物配置的灌胃溶液灌食 (含有 10 %活性碳及測 試物) 。而後追蹤計算排空率,活性碳則以黑色易觀察之特性 作為胃腸排空之另一指標。 30 分鐘後,大白鼠去頭犧牲,隨 後剪開腹腔以線綁住賁門處,將胃、小腸完整取出,計算胃腸 排空率,方法如下: charcoal marker Charcoal Transit=──────────× 100% Intestinal length 2 人體實驗 (1) 核子醫學檢查:目前只使用於 gastric emptying study -讓病人服下含有放射源 (Tc-99m and In-i11) 的固體及液 體食物 -測量病人 90 分後的胃排空率 (2) 放射線科檢查:小腸排空速度檢測 -請病人喝下 600 cc 鋇鹽 (barium salt) 後,隔 15 分透 視一次,直到鋇鹽完全排出迴腸辮 (ileocecal valve) 。 (四) 結果判定:糞便重量或粒數明顯增加,再加上胃腸運動實驗或排便 時間中有任何一項結果為實驗組明顯優於控制組 (p<0.05) ,即可 判定測試食品具有潤腸通便之功能。 五 有助於胃黏膜之保護作用,維持腸道正常機能 (一) 實驗內容: 1 離體實驗:培養鼠胃黏膜細胞,先將測試物至於胃黏膜細胞內, 培養 2 小時,而後置入酸性培養液 (pH=4) 或含 indomethac- in 之培養液下。測定胃黏膜細胞之存活率 (viabiliy) 的變化 (MTT assay) ,若實驗組明顯優於控制組 (p<0.05) ,即可判 定測試食品具有保護作用之功能。 2 活體實驗:胃酸的分泌測定:Shay 潰瘍法 (Shay's ulcer) 雄性實驗絕食老鼠 (24 小時) ,胃部幽門結紮,再予以縫合復 原,俟 4 小時候,將其犧牲取出胃部,收集胃液並定量胃液體 積,並以 01N NaOH 溶液滴定,求其實驗組及控制組之總酸度之 變化若 p<0.05 ,即可判定測試食品具有胃黏膜保護作用之功能 。 (二) 結果判定:任何一項結果為實驗組明顯優於控制組 (p<0.05) , 即可判定測試食品具有幫助胃黏膜保護之功能。 六 減少胃內幽門螺旋桿菌 (一)受試者的篩選 1 志願參與者先填寫一份問卷,包括個人飲食、生理習慣及健康狀 況(含是否有慢性病,需要隨時服藥等)。 2 體檢,包括醫生問診、體位測驗、及血液生化檢查(含血紅素、 血球比容、血糖、血脂肪、肝功能及腎功能)。 3 依據前兩項的資料,篩去習慣特異及健康不良的參與者。然後填 寫志願書,進行尿素呼氣試驗(urea breath test),以得 13 CO2 /12CO2 比值(即ΔUBT 值)。就ΔUBT 值決定受試對象( 建議ΔUBT>10%O 者)。 (二)實驗方法 1 受試者在實驗開始前三週每四天測一次ΔUBT 值,以觀察其日常 飲食是否影響該值;並計算其平均值,以作為實驗開始後的比較 。 2 每位受試者於實驗前必須接受飲食指導。實驗開始前須經 2~3 週之穩定期,於穩定期間應按其個人之原飲食習慣攝食,並避免 暴飲暴食或其他特殊食物之攝取,且亦不可服用整腸健胃藥物、 補充劑、抗生素、組織胺-2 拮抗劑、抗氧化劑、強調整腸健胃 的機能性食品,或其他不明藥物等。並於該其間進行幽門螺旋桿 菌之測試,而獲得至少最後之 3 次為近似恆定值,其平均值作 為實驗之起始值(initial value) 。 3 實驗期間(最少二週)的飲食按上述穩定期間之條件進食,且加 食試驗品穩定與實驗期間定期測量其ΔUBT 值、血液生化檢查、 體檢、與問卷調查,以瞭解其實驗期間健康情形及身體的感覺。 4 ΔUBT 值測定:受試者在受試前一天晚上 10 點以後禁食,次晨 刷牙、漱口,靜坐 5 分鐘後飲用 200 mL 的 0.1N 檸檬酸溶液 ,漱口、靜坐 10 分鐘後,吹氣至 2 支 10 mL 的氣體收集管 。再靜坐 5 分鐘後飲用 50 mL 含 13C 標識的尿素(50mg) 溶液,再漱口、靜坐 10~20 分鐘後,吹氣至 2 支 10mL 的氣 體收集管。所收集的氣體以 isotope ratio mass spectrometer (IRMS)分析其ΔUBT 值。 (三)結果判定 1 若受試者之ΔUBT 值於實驗後比實驗前有明顯(p<0.05) 降低 ,則表示該試驗品具有減少幽門螺旋桿菌之生理功能。 2 經體檢及問卷調查結果,若於實驗期間及實驗後一週沒有明顯不 舒服的感覺或其他健康問題,特別是腸胃道問題,則可判斷該試 驗品沒有安全上的問題。 參考文獻 (1) Munoa, F. J. and Pares, R. 1988) Selective medium for isol- ation and enumeration of Bifidobacterium spp. Appl. Environ . Microbiol. 54: 1715 - 1718. (2) Tanaka, R. and Mutai, M. (1980) Improved medium for sele- ctive isolation and enumeration of Bifidobacterium. Appl. Environ. Microbiol. 40: 866-869. (3) FDA. 1992. Clostridium perfringens. In "Bacteriological An- alytical Manual". 7th edition, Chap. 16. pp.209-214. U.S. Food and Drug Administration. Washington, DC. (4) Ishibashi, N. and Shimamura, S. (1993) Bifidobacteria: R- esearch and development in Japan. Food Tech. 47 (6) : 126-1 35. (5) Mitsuoka, T. (1978) Intestinal Bacteria and Health . Har- court Brace Jovanovich Japan Inc. Tokyo. (6) Hoover, D. G. (1993) Bifidobacteria: Activity and pontent- ial benefits. Food Tech. 47 (6) : 120-124. (7) Robison,C. H., Lawler, M. R., Wanda, L. C. and Garwick, A. E. (1990) Normal and Therapeutic Nutrition 17th edition . Macmillan Publishing Company, NY. (8) Miller, M. S., Galligan, J. J. and Burks, T. F. (1981) Acc- urate measurement of intestinaltransit in the rat. J. Phar- macol. Meth. 6: 211-217. (9) Holtze, P. 1 (985) Stimulation and inhibition of gastroint- estinal propulsion induced by substance P and substance K in the rat. Br. J. Pharmacol. 86: 305-312. (10) Green, A. F. (1959) Comparative efffects of analgesics on pain threshold,respiratory frequency and gastrointestinal propulsion. Br. J. Pharmacol. 14: 26-34. (11) Takagi, K. and Okabc, S. (1968) The effect of drugs on the production and recovery processes of the stress ulcer. Ja- pan. J. Pharmacol. 18: 9-18. (12) Shay, H., Komarov, S. A., Fels, S., Meranxe, S., Gruenste- in, D. and Siplet, H. (1945) A simple method for the un- iform production of gastric ulceration in the rat. Gastro- enteroloty 5: 43-61. (13) Takagi, K., Okabc, S. and Saziki, R. (1969) A new method for the production of chronic gastric ulcer in rats and t- he effect of several drugs on its healing. Japan. J. Phar- macol. 19: 418-426. (14) Waisman, G., Dinari, G., Marcus, H., Ligumsky, M., Rosenb- ach, Y., Zahavi,I. and Nitzan, M. (1985) Naloxone is pr- otective against indomethacin- induced intestinal ulcerat- ion in the rat. Gastroenteroloty 89: 86-91. (15) McNeely MDD (1996) Gastrointectinal function a digestive disease. In Clinical Chemistry, Pesce, A.J., Kaplan, L.A., editors, Pesce Kaplan Publishers. (16) Sleisenger MH, Fordtran JS (1993) Gastrintertinal disea- se vol.2, P 1593-1594, W.B. Saunders Compary. (17) Brandt LJ (1999) Clinical practice of Gastroenterrlopy, Vol.2, P 1190, Churchill livingstone compary. (18) Dahlqvist, A. (1964) Method for assay of intestinal disa- ccharidase. Anal. Biochem. 7: 18-25. (19) Peterson, G.L. (1977) A simplification of the protein as- say method of Lowry et al. which is more generally applic- able. Anal. Biochem.83:346-356. (20) Verduin, P.A., Punt, J.M., Kreutzer, H.H. (1973) Studies of the determination of lipase activity. Clin. Chim. Acta 46:11-19. (21) Martinek, P.G., Berger, L., Broidda, D. (1964) Simplified estimation of leucine aminopeptidase (LAP) activity. Cl- in. Chem. 10: 1087-1097. (22) Massion,C.G., McNeely, M.D. (1973) Accurate micromethod f- or estimation of both medium-and long-chain fatty acids a- nd triglycerides in fecal fat. Clin. Chem. 19: 499-505. (23) Benson, J. A., Culver, P.J., Ragland, S., Jones, C.M., Dr- ummey, G.D., Bougas,E (1957) The D-xylose absorption te- st in malaborption syndromes. N. Engl. J. Med. 256: 335-33 9. (24) Fuji, Y., Matsura, T., Kai, M., Kawasaki, H. and Yamada, K . (2000) Protection by polaprezinc, and anti-ulcer drug, against indomethacin - induced apoptosis in rat gastric m- ucosal cells. Jpn J Pharmacol. 84: 63-70. (25) Furukawa, O., Nakamura, E. and Okabe, S. (1997) Charact- erization of a novel cell damage model induced by acid and pepsin using rat gastric epithelial cells: protective eff- ect of sucralfate. J Gastroenterol Hepatol. 12: 115-121. (26) Beerens, H. 1990. An elective and selective isolation med- ium for Bifidobacterium spp. Letters in Applied Microbiol- ogy 11: 155 - 157. (27) Chatterjee, A., Yasmin, T., Bagchi, D. and Stohs, S. (2003 ) The bactericidal effects of Lactobacillus acidophilus, garcinol and Protykin compared to clarithromycin, on Heli- cobacter pylori. Molecular Cellular Biochem. 243:29-35. (28) Wong, W. M., Wong, B. C. Y., Wong, K. W., Fung, F. M. Y., Lai, K. C., Hu, W. H. C., Yuen, S. T., Leung, S. Y., Lau, G. K. K., Lai, C. L., Chan, C. K., Go, R. and Lam, S. K. ( 2003) 13C-urea breath test without a test meal is highly accurate for the detection of Helicobacter pylori infecti- on in Chinese. Alim. Pharm. Ther. 14:1353-1358. |
全站熱搜
留言列表